pcr的产物有多少种

T2噬菌体的遗传物质是DNA（脱氧核糖核酸）,彻底水解的产物有：磷酸、脱氧核糖、含氮碱基（四种：A、T、C、G）再问：可是选项是A8种，B7种，C5种，D6种.....老师让我们写试卷分析。。真心不会

.同步双酶切同步双酶切是一种省时省力的常用方法.选择能让两种酶同时作用的最佳缓冲液是非常重要的一步.NEB每一种酶都随酶提供相应的最佳NEBuffer,以保证100%的酶活性.NEBuffer的组成及

模板是什么?基因组么?两次用的模板是一批做的么?时间长的话模板可能会降解

不是这么看的,同学.我们先来看正丁烷：如你所说,正丁烷的确有10个氢,但是你要知道,它是一个结构对称的化学物,所以你只要看半边的结构就好了.那为什么不是5个异构体呢?那是因为同一个碳原子上的氢是等效的

这个是可以的,只是效率不高

当然可以的.

博凌科为的这款产品是同类产品中比较不错的.它是在高离序盐存在的情况下,DNA片断选择性的吸附于离心柱内的硅基质膜上,再通过一系列快速的漂洗－离心的步骤,去蛋白液和漂洗液将引物、核苷酸、蛋白、酶等杂质去

18-25bp产物啊,半定量无所谓吧.这年头为什么还做半定量呢,直接做q-pcr也不贵啊,产物80到500bp,偶喜欢100-300bp的样子.

1:2.7可以看做10：27假设由3Fe+8HNO3=3Fe(NO3)2+2NO(g)+H2O可以知道此时已经是消耗比较少Fe的了（如果是Fe与HNO31:4反应显然不够)随意推测可知道Fe不可能与它

PCR产物纯化试剂盒去除的是PCR反应体系中的离子、dNTP、引物以及聚合酶,收集其中的DNA片段.这只适合于几乎没有非特异性条带的PCR产物的收集.如果你的PCR产物具有非特异性条带,那么一定需要使

是的啊,可以用PCR产物做模板再PCR一次.再问：那是用PCR反应体系中PCR产物做吗还是需要把PCR产物提纯后再重新加入PCR反应体系这种二次PCR效果怎么样十分感谢再答：是啊，可以不用提纯的，因为

问题很多啊.或者是你的PCR仪需要进行荧光校准（如果其他探针也没有信号的话）,已经不能收集荧光信号了.或者是你的探针本身就有问题,合成的不好,信号很弱甚至没有信号.或者是你的探针存放时间太长,存放条件

能说一下你这样酶切的目的么?40bp和36bp的条带,只相差4个bp,基本上在琼脂糖胶上就不用考虑分清楚了.最好使用聚丙烯酰胺凝胶,很多用变性聚丙烯酰胺凝胶,可以分离到碱基数相差很少的条带,而某些变性

引物二聚体出现没关系的,直接回收目的条带即可.对实验没有什么影响.

原理：是来至于双脱氧链终止法——现在应用最多的核酸测序技术,由Sanger等1977年提出：模板经过测序PCR反应后形成3'末端带有荧光标记（早期用同位素标记）的相差一个碱基的不同长度的产物,再根据每

首先要看你的条带是否清晰,虽然亮度不够但是清晰度应该高,没有拖尾没有非特异条带和引物二聚体,如果以上都没有,仅仅是目标条带不够亮的话,我觉得你可以将25微升体积同比放大至50微升反应体系,相应的制胶的

对PCR产物进行电泳是为了观察多态性条带的情况；目的片段大小的bp是指核酸序列的长度有多少个碱基对组成.

如果你切的是PCR产物的两端,那么跑胶是看不出来区别的.选择这样只是因为方便,酶切的效率要取决于保护碱基、酶的质量等等,一般根据经验切完之后,挖胶回收,如果产物带很特异的话,直接PCR产物回收也可以（

非特异性条带的出现,其原因：一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体.二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低,及PCR循环次数过多有关.其次是酶的质和量,往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一

可分为长产物片段和短产物片段两部分.短产物片段的长度严格地限定在两个引物链5'端之间,是需要扩增的特定片段.短产物片段和长产物片段是由于引物所结合的模板不一样而形成的,以一个原始模板为例,在第一个反应